Estabelecimento in vitro de segmentos apicais e formação de plântulas de libidibia ferrea (UL.) L. P. Queiroz
| dc.contributor.advisor | Liberato, Maria Astrid Rocha | |
| dc.contributor.author | Monteiro, João Antônio dos Santos | |
| dc.contributor.co-advisor | Silva, Daniel | |
| dc.contributor.referee | Melo, Maria da Glória Gonçalves de | |
| dc.contributor.referee | Batista, Ieda Hortêncio | |
| dc.creator.Lattes | http://lattes.cnpq.br/5068422164964872 | pt_BR |
| dc.date.accessioned | 2022-01-10T12:47:53Z | |
| dc.date.accessioned | 2024-09-08T11:29:15Z | |
| dc.date.available | 2021-01-10 | |
| dc.date.available | 2022-01-10T12:47:53Z | |
| dc.date.issued | 2019-08-02 | |
| dc.description.abstract | Libidibia ferrea known as jucá, belongs to the Fabaceae a native family of Brazil, it is distributed in the North and Northeast. It is a medicinal species with therapeutic and antimicrobial properties with compounds of pharmaceutical importance. However, it has cutaneous numbness with difficulties in seed production, which impairs its propagation. So, the objetive of this paper was to verify the efficacy of disinfestation methods for nodal segments, and the influence of indolbutyric acid for the ex vitro establishment of L. ferrea apical segments. The study was conducted in two experiments at the LASTED Forestry and Digital Technologies laboratory. For experiment I, nodal segments were obtained from matrix plants of Campus III, INPA. The explants were submitted to different sodium hypochlorite solutions (0.10, 0.50 and 1%); 70% alcohol, systemic fungicide (25, 50, 75 and 100%), as well as the combination of these disinfectant agents. The results indicate that 100% of explants presented microbial contamination and oxidation and no treatment was efficient for in vitro establishment of nodal segments. Experiment II was developed in the LASTED nursery. Plant material was obtained from juvenile L. ferrea seedlings grown at INPA. The design used was completely randomized in a 3 x 3 factorial scheme, with a stake type: apical; three substrates: organic soil, vermiculite and organic soil + vermiculite; and three indolbutyric acid concentrations 0, 1000 and 3000 (mg L-1). The cuttings were conducted on three types of substrates in plastic trays. After 90 days the following variables were evaluated: survival (%), rooting (%), number of shoots, cut length (cm), root length (cm) and number of leaves. The results were submitted to variance analysis and the means were compared by Tukey test at 5% probability. The results showed that the jucá cuttings showed easy survival, rooting and uniform growth in all tested treatments. The combination of apical cuttings with organic soil + vermiculite substrate at IBA concentration 1000 (mg L-1) promoted a higher cuttings development. Keywords: juca, explant decontamination, cutting. | pt_BR |
| dc.description.resumo | Libidibia ferrea conhecida como jucá pertence à família Fabaceae nativa do Brasil, distribuída no Norte e Nordeste. É uma espécie medicinal com propriedades terapêuticas e antimicrobianas com compostos de importância farmacêutica. No entanto, apresenta dormência tegumentar com dificuldades na produção de sementes o que prejudica sua propagação. Sendo assim, esse trabalho teve como objetivo verificar a eficácia de métodos de desinfestação para segmentos nodais, e a influência do ácido indolbutírico para o estabelecimento ex vitro de segmentos apicais de L. ferrea. O estudo foi desenvolvido, em dois experimentos, no laboratório de Silvicultura e Tecnologias Digitais LASTED. Para o experimento I, os segmentos nodais foram obtidos de plantas matrizes do Campus III, INPA. Os explantes foram submetidos em diferentes soluções de hipoclorito de sódio (0,10, 0,50 e 1%); álcool 70%, fungicida sistêmico (25, 50, 75 e 100%), bem como a combinação destes agentes desinfetantes. Os resultados indicam que 100% de explantes apresentaram contaminação microbiana e oxidação sendo que nenhum tratamento foi eficiente para o estabelecimento in vitro de segmentos nodais. O experimento II foi desenvolvido no viveiro do LASTED. O material vegetal foi obtido de plântulas juvenis de L. ferrea cultivadas no INPA. O delineamento utilizado foi inteiramente casualizado em esquema fatorial 3 x 3, com um tipo estaca: apical; três substratos: solo orgânico, vermiculita e solo orgânico + vermiculita; e três concentrações de ácido indolbutírico 0, 1000 e 3000 (mg L-1 ). As estacas foram conduzidas em três tipos de substratos em bandejas de plástico. Após 90 dias foram avaliadas as seguintes variáveis: sobrevivência (%), enraizamento (%), número de brotações, comprimento da estaca (cm), comprimento da raiz (cm) e número de folhas. Os resultados obtidos foram submetidos à análise de variância e as médias foram comparadas pelo teste de Tukey a 5% de probabilidade. Os resultados mostraram que as estacas de jucá apresentaram facilidade de sobrevivência, enraizamento e crescimento uniforme em todos os tratamentos testados. A combinação de estaca apical com o substrato solo orgânico + vermiculita na concentração 1000 (mg L-1) de AIB promoveu maior desenvolvimento das estacas. Palavras chaves: jucá, descontaminação de explantes, estaquia. | pt_BR |
| dc.identifier.citation | MONTEIRO, João Antônio dos Santos. Estabelecimento in vitro de segmentos apicais e formação de plântulas de libidibia ferrea (UL.) L. P. Queiroz. 2019. 58 f. TCC (Graduação em Ciências Biológicas) - Universidade do Estado do Amazonas, Manaus. | pt_BR |
| dc.identifier.uri | https://ri.uea.edu.br/handle/riuea/4520 | |
| dc.language | por | pt_BR |
| dc.publisher | Universidade do Estado do Amazonas | pt_BR |
| dc.publisher.country | Brasil | pt_BR |
| dc.publisher.initials | UEA | pt_BR |
| dc.relation.references | AGUIAR, C. Arquitetura de Plantas. Instituto Politécnico de Bragança, Escola Superior Agrária, 39 p. 2014. ANDRADE, M. W. de; LUZ, J. M. Q.; LACERDA, A. S.; MELO, P. R. A. Micropropagação da Aroeira (Myracrodruon urundeuva Fr. All). Ciência e Agrotecnologia, Lavras, v. 24, n. 1, p. 174-180, jan./mar. 2000. ANTUNES, L. E. C.; CHALFUN, N. N. J.; REGINA, M. A. Propagação de cultivares de amoreira-preta (Rubus spp.) através de estacas lenhosas. Revista Brasileira de Fruticultura, Jaboticabal, v. 22, n. 2, p. 195-199, abr. 2000. AZEVEDO, J. L. Microbiologia de microorganismos endofíticos. In: MELO, I. S.; AZEVEDO, J. L. de (ed.). Ecologia microbiana. Jaguariúna/ EMBRAPA-CNPMA, 488 p. 1998. BASSAN, J. S.; REINIGER, L. R. S.; ROCHA, B. H. G.; SEVERO, C. R. P.; FLÔRES, A. V. Oxidação fenólica, tipo de explante e meios de cultura no estabelecimento in vitro de canafístula (Peltophorum dubium). Ciência Florestal, v.16, n.4, p.381-390, 2006. BENEDITO, C.P.; COELHO, M. de F. B.; GUIMARÃES, I. P.; JUNIOR, V. P. A.; MAIA, S. S. S.; BATISTA, P. F. Emergência e crescimento inicial de plântulas de Caesalpinia ferrea Mart. ex Tul. var. férrea em diferentes substratos. Revista Brasileira de Ciências Agrárias, v.7, n.3, p.508-513, 2012. BHOJWANI, S. S.; DANTU, P. K. Micropropagation. In: Plant Tissue Culture: Na Introductory Text. India: Springer India, p. 245–274. 2013. BORDIN, I.; HIDALGO, P. C.; Bürkle, R.; ROBERTO, S. R. Efeito da presença da folha no enraizamento de estacas semilenhosas de porta-enxertos de videira. Ciência Rural, Santa Maria, v. 35, p.215-218, jan-fev, 2005. BRASIL. Formulário de Fitoterápicos Farmacopeia Brasileira. 1ª ed. Brasília: Agência Nacional de Vigilância Sanitária (ANVISA), 2011. BURGOS, A. M. L.; LÓPEZ, A. E.; CENÓZ, P. J. Propagación del anís de campo Ocimum selloi (Lamiaceae) por medio de esquejes. In: Comunicaciones científicas y tecnológicas. Resumen Corrientes: Universidad Nacional del Nordeste, 2004. CANHOTO, J. M. Biotecnologia vegetal: da clonagem de plantas à transformação genética. Editora Coimbra: p. 407, 2010. CARVALHO, J. M. F.; VIDAL, M. S. Noções de Cultivo de Tecidos Vegetais. Campo Grande: Embrapa, 42 p. 2003. CID, L.P.B. A propagação in vitro de plantas. O que é isso? Rev. Biotecnologia, Ciência e Desenvolvimento. 8p. 2002. CLEMENT, C.R.; BOREM, A.; LOPES, M.T.G. Da domesticação ao melhoramento de plantas. Domesticação e Melhoramento: espécies amazônicas. Editora UFV, Viçosa, 2009. CHAGAS, E. A.; PASQUAL, M.; SOARES, J. D. R.; RODRIGUES, F. A. Tissue culture techniques for native Amazonian fruit trees. In: LEVA, A.; RINALDIP, M. R. (Eds.). Recent advances in plant in vitro culture. Croatia: InTech Prepress, p. 151- 164, 2012. COSTA, L. M. Desenvolvimento de produto seco por aspersão obtido a partir das cascas do caule de Libidibia ferrea Martius var ferrea (fabaceae). Dissertação (Mestrado em Ciências Farmacêuticas). Manaus: UFAM, 2012. 127p. COUTO, J.M.F.; OTONI, W.C.; PINHEIRO, A.L.; FONSECA, E.P. Desinfestação e germinação in vitro de sementes de mogno (Swietenia macrophylla King). Revista Árvore, Viçosa, v.28, n.5, p.633-642, 2004. CUNHA, A. L. B. Propagação vegetativa de Piper hispidum sw. e Piper tuberculatum jacq. em função de diferentes substratos e tipos de estacas. Mestre em Agronomia Tropical – Universidade Federal do Amazonas. Manaus, AM, 2014. DI STASI, L. C. Plantas medicinais: arte e ciência: um guia de estudo interdisciplinar. São Paulo: Ed. UNESP, 230 p. 1996. DUTRA, L. F.; HANSEL, F. A.; WENDLING, I. Introdução ao cultivo in vitro de Erva mate (Ilex paraguariensis). Boletim de pesquisa e desenvolvimento / Embrapa Florestas. Colombo, 2008. EMMANUEL, E.; KECK, G.; BLANCHARDB, J. M.; VERMANDEB, P.; PERRODINA, Y. Toxicological effects of disinfestation using sodium hypochlorite on aquatic organisms and its contribution to AOX formation in hospital wastewater. Environment International, Cumbria, v. 30, p. 891-900, 2004. ERIG, A.C.; SCHUCH, M.W. Tipo de explante e controle da contaminação e oxidação no estabelecimento in vitro de plantas de macieira (Malus domestica Borkh.) cvs. Galaxy, Maxigala e Mastergala. Revista Brasileira Agrociência, Pelotas, v. 9, n. 3, p. 221-227, 2003. ESPINOSA, C. A.; PUENTE, C. A.; GARCIA, S. In vitro plant tissue culture : means for production of biological active compounds. Planta, v. 248, n. 1, p. 1–18, 2018. FACHINELLO, J.C.; HOFFMANN, A.; NACHTIGAL, J.C.; KERSTEN, E.; FORTES, G.R.L. Propagação de plantas frutíferas de clima temperado. Pelotas; UFPEL, 1994. 179p. FACHINELLO, J. C.; HOFFMANN, A.; NACHTIGAL, J. C. Propagação de plantas frutíferas. Brasília, DF: Embrapa Informação Tecnológica; Bento Gonçalves: Embrapa Uva e Vinho, 132p. 2005. FERREIRA, L. E.; ANDRADE, L. A. de; GONÇALVES, G. S.; SOUZA, E. P. de; FERREIRA, H. V. Diâmetro de estacas e substratos na propagação vegetativa de maniçoba, Manihot glaziovii Muell. Arg. Revista Ciência Agronômica, 393-402. Centro de Ciências Agrárias - UFC, Fortaleza, CE. 2010. FAIVRE-RAMPANT, O.; CHARPENTIER, J. P.; KEVERS, C. M.; DOMMES, J.; VAN ONCKELEN, H.; DAY-ALLEMAND, C.; GASPAR, T. Cuttings of the nonrooting rac tobacco mutant overaccumulate phenolic compounds. Function Plant Biol 29: 63- 71. 2002. FERNANDES, A.A.; MARTINEZ, H. E. P.; SILVA, D. J. H. da; BARBOSA, J. G.; Produção de mudas de tomateiro por meio de estacas enraizadas em hidroponia. Pesquisa Agropecuária Brasileira, v.39, n.4, p.343-348, 2004. FREITAS, C. A. B. Estabelecimento in vitro de Annona crassiflora e Annona squamosa utilizando segmentos nodais. Dissertação Mestre em Biologia Geral - Universidade Federal da Grande Dourados. Dourados, 2014. GALDIANO JÚNIOR, R. F.; MANTOVANI, C.; PIVETTA, K. F. L.; LEMOS, E. G. de M. Crescimento in vitro e aclimatização de Cattleya loddigesii Lindley (Orchidaceae) com carvão ativado sob dois espectros luminosos. Ciência Rural, Santa Maria, v. 42, n.5, p. 801-807, 2012. GALDINO, G.; MESQUITA, M. R.; FERRAZ, I. D. K. Descrição morfológica da plântula e diásporos de Caesalpinia ferrea Mart. Revista Brasileira de Biociências, Porto Alegre, v. 5, supl. 2, p. 747-749, jul. 2007. GEORGE, E. F.; SHERRINGTON, P. D. Plant propagation by tissue culture. 1. ed. Eversley: Exegetics,709 p. 1984. GONÇALVES, A. L.; CATHARINO, E. L. M.; TOYOFUKU, R. A. Efeitos de diferentes substratos no enraizamento de estacas apicais e não apicais de Rhipsalis elliptica G.A. Lindberg, Cactaceae. In: Congresso brasileiro de floricultura e plantas ornamentais, 8., 1991, Joinvile. Anais. Joinvile: UFSC, 1991. p. 68. GOULART, A. C. P.; FIALHO, W. F. B. Incidência e controle de Fusarium moniliforme Sheldon em sementes em milho. Revista Brasileira de Sementes, 21(1): p. 216-22, 1999. GRATTAPAGLIA, D.; MACHADO, M.A. 1998. Micropropagação. In: Torres, A.C.; Caldas, L.S.; BUSO, J.A. (eds.) Cultura de Tecidos e Transformação Genética de Plantas. Vol. I. Embrapa-SPI / Embrapa-CNPH. Brasília. p.183 - 260. HARTMANN, H. T.; KESTER, D. E.; DAVIES JUNIOR, R. T.; GENEVE, R. L. Plant Propagation: principles and pratices. 8 ed. New Jersey: Prentice Hall, 915p. 2011. KERBAUY, G. B. Clonagem de plantas in vitro: uma realidade. Biotecnologia. Ciência e Desenvolvimento, v. 1, p. 30–33, 1997. KOZAI, T.; KUBOTA, C. Concepts, definitions, ventilation methods, advantages and disavantages. In: KOZAI, T.; et al (Ed.). Photoautotrophic (Sugar-free medium) micropropagation as a new micropropagation and transplant production system. Netherlands: Springer, p. 19-22. 3 cap. 2005. JAAKOLA, L.; TOLVANEN, A.; LAINE, K.; HOHTOLA, A. Effect of N6 isopentenyladenine concentration on growth initiation in vitro and rooting of bilberry and lingonberry microshoots. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, Hague, v.66, p.73-77, 2001. LEBOWITZ, F.J. Plant Biotecnology, a labotatory manual. 1995. LIMA, C. S. M.; BANDEIRA, J. de M.; RUBIN, S.; RIBEIRO, M. V.; BENITEZ, L.; PETERS, J. A.; BRAGA, E. J. B. Influência de fitorreguladores no crescimento in vitro de partes aéreas de Mentha viridis. Revista Brasileira de Biociências, v.5, supl.2, p.669-671, 2007. LIMA, R. L. S.; SIQUEIRA, D. L.; WEBER, O. B.; CAZETTAS, J.O. Comprimento de estacas e parte do ramo na formação de mudas de aceroleira. Revista Brasileira de Fruticultura, v. 28, n. 1, p. 83-86, 2006. LONDE, L. N.; SOUSA, C. S.; VIEIRA, C. U.; BONETTI, A. M.; KERR, W. E. Efeito do benomyl e identificação de fitopatógenos em meio MS para controle da contaminação na micropropagação de Anacardium humile (Anacardiaceae). Bioscience Journal, 23(3): p. 94-100, 2007. LORENZI, H. Árvores brasileiras: manual de identificação e cultivo de plantas arbóreas nativas do Brasil. Nova Odessa: Plantarum, 1992. LORENZI, H.; MATOS, F.J.A. Plantas medicinais no Brasil: nativas e exóticas. Nova Odessa: Plantarum, 512p, 2002. LOPES, C.A.; QUEZADO-SOARES, A.M. Doenças bacterianas: diagnose e controle. Brasília: Embrapa - CNPH, 70p, 1997. MAIA, G.N. Caatinga: árvores e arbustos e suas utilidades. São Paulo: D&Z Computação Gráfica, Leitura & Arte, 413 p. 2004. MORAIS, T. P.; LUZ, J.M.Q.; SILVA, S.M.; RESENDE, R.F.; SILVA, A.S. Aplicações da cultura de tecidos em plantas medicinais. Brazilian Journal of Medicinal Plants, v. 14, n. 1, p. 110–121, 2012. MURASHIGE, T.; SKOOG, F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum, Kopenhagen, v.15, n. 3, p. 473-497, 1962. NAKAMURA, E. S. KUROSAKI, F.; ARISAWA, M.; MUKAINAKA, T.; OKUDA, M.; TOKUDA, H.; NISHINO, H.; PASTORE, F. Cancer chemopreventive effects of constituents of Libidibia ferrea and related compounds. Cancer Letters, v. 177, n. 2, p. 119–124, 2002. NOGUEIRA, J. C. B. Reflorestamento heterogêneo com essências indígenas. Boletim Técnico do Instituto Florestal. São Paulo, v. 24, 71p, 1977. NAUE, C.R.; BENITIZ, L.B.; MEDEIROS, C.V. Eliminação de contaminantes microbianos da cultura de tecidos de Nicotiana tabacum L. In: Congresso iniciação científica, 16. 2007, Pelotas. Resumos. Faculdade de Agronomia Eliseu Maciel, 2007. p.1-5. NAVES, V.C. Propagação in vitro de bromélia imperial Alcantarea imperialis (Carrière) Harms. Dissertação (Mestrado em Agronomia) - Universidade Federal de Lavras. Lavras: UFLA, 2001. 76p. NICOLOSO, F. T.; CASSOL, L. C.; FORTUNATO, R. P. Comprimento da Estaca de ramo no enraizamento de Ginseng Brasileiro (Pfaffia Glomerata). Ciência Rural, Santa Maria, v.31, n.1, p.57-60, 2001. NOZAKI, A.H.; HAYASHI, K.; KIDO, M.; KAKUMOTO, K.; IKEDA, S.; MATSUURA, N.; TANI, H.; TAKAOKA, D.; iinuma, M.; AKAO, Y. Pauferrol, a novel chalcone trimer with a cyclobutane ring from Caesalpinia ferrea Mart exhibiting DNA topoisomerase II inhibition and apoptosis-inducing activity. Tetrahedron Letters. v. 48, p. 8290–8292, 2007. PAIVA, H. N.; GOMES, J.M. Propagação Vegetativa de Espécies Florestais. 3.ed. Viçosa, MG: UFV, 2005. PASQUAL, M.; HOFFMANN, A.; RAMOS, J.D. Cultura de tecidos vegetais: tecnologia e aplicação. Lavras: UFLA, 1997. 159p. PINTO, J. E. B. P.; LAMEIRA, O. A. Micropropagação e Metabólitos Secundários in vitro de Plantas Medicinais. Lavras: UFLA/FAEPE, 102 p. 2001. PRANCE, G. T.; SILVA, M. F. Arvores de Manaus. Manaus, Instituto Nacional de Pesquisas da Amazônia. 312 p., 1975. PELCZAR, M. J. J.; CHAN, E. C. S.; KRIEG, N. R. Microbiologia: conceitos e aplicações. São Paulo: Makron Books, v. 1, p. 210-224, 1996. PIO, R.; PIO, R.; CHALFUN, N.; COELHO, J.; CONTIJO, T.; CARRIJO, E. Enraizamento de estacas apicais de figueira tratadas com sacarose e ácido indolbutírico por imersão rápida. Revista Brasileira Agrociência, v.9, n.1, p.35-38, 2003. PIO, R; BASTOS, D. C.; BERTI, A. J.; FILHO, J. A. S.; Filho, F. A. A. M. F.; Entelmann, F. A.; ALVES, A. S. R.; NETO, J. E. B. Enraizamento de diferentes tipos de estacas de oliveira (Olea europaea L.) utilizando ácido indolbutírico. Ciência Agrotecnológica, Lavras, v. 29, n. 3, p. 562-567, mai-jun, 2005. QUEIROZ, L. P. Leguminosas da caatinga. [s.l.] Universidade Estadual de Feira de Santana, 2009. QUISEN, R.C; ANGELO, P.C. SILVA. Manual de Procedimentos do Laboratório de Cultura de Tecidos. Manaus, AM: EMBRAPA- Amazônia Ocidental, 44p, 2008. RIBAS, L. L. F.; ZANETTE, F.; KULCHETSCKI, l.; GUERRA, M. P. Micropropagação de Aspidosperma polyneuron (peroba-rosa) a partir de segmentos nodais de mudas juvenis. Revista Árvore, Viçosa, MG, n. 4, p. 517-524, 2005. RIBEIRO, J.M.; BASTOS, D.C Biorreatores: aspectos gerais e sua utilização para cultura de tecidos vegetais. Petrolina: Embrapa Semi-Árido, 26p, 2008. RUÍZ-SOLSOL, H.;MESÉN, F. Efecto del ácido indolbutírico y tipo de estaquilla en el enraizamiento de Sacha Inchi (Plukenetia volubilis L.). Agronomia Costarricense, v.34, n.2, p.259-267, 2010. SALLES, E. A. P. B. Desinfestação e introdução in vitro de segmentos nodais de Acacia mearnsii. Pesquisa Florestal Brasileira v. 37, n. 92, p. 485-491, out./dez. 2017. SCHERWINSKI-PEREIRA, J.E. (Ed.). Contaminações microbianas na cultura de células, tecidos e órgãos de plantas. Brasília, DF: Embrapa Informação Tecnológica, 2010, 446p. SCHUCH, M.F.; ERIG, A.C. Micropropagação de plantas frutíferas. In: FACHINELLO, J.C.; HOFFMANN, A.; NACHTIGAL, J.C. Propagação de plantas frutíferas. Brasília: Embrapa Informação Tecnológica, 2005. 221p. STUMPF, E. R. T.; GROLLI, P. R.; SILVA, J. A. G.; Enraizamento de estacas de Chamaecyparis lawsoniana Parl. em cinco substratos com uso de ácido indolbutírico. Ciência Rural, Santa Maria, v. 29, n. 2, p. 207-211, 1999. TAIZ, L.; ZEIGER, E. Fisiologia Vegetal. 4 ed. Artmed, p. 622-624. 2009. VASSIL, I.K.; THORPE, T.A. Plant cell, and tissue culture. Dordrecht: Kluwer Academic Publischers, 1994. 593p. VENGADESAN, G.; GANAPATHI, A.; PREAM ANAND, R.; SELVARAJ, N. In vitro propagation of Acacia sinuata (Lour.) Merr. from nodal segments of a 10-year-old tree. In Vitro Cellular and Developmental Biology – Plant, Heidelberg, v. 39, n. 4, p. 409-414, 2003. WENDLING, I. 2003. Propagação vegetativa. I Semana de estudo universitário – Florestas e meio ambiente. Embrapa Florestas. XIMENES, N.C.A. Purificação e Caracterização da Lectina da Vagem da Caesalpinia ferrea (Cf e PL): aplicação biológica. Dissertação de Mestrado em Bioquímica Universidade Federal do Pernambuco, Recife. 53p, 2004. YAMAMOTO, L. Y.; KOYAMA, R.; BORGES, W. F. S.; ANTUNES, L. E. C.; ASSIS, A. M.; ROBERTO, S. R. Substratos no enraizamento de estacas herbáceas de amora preta Xavante. Revista Ciência Rural, Santa Maria, v.43, n.1, p.15-20, jan, 2013. | pt_BR |
| dc.rights | Acesso Aberto | pt_BR |
| dc.subject | Jucá | pt_BR |
| dc.subject | Descontaminação de explantes | pt_BR |
| dc.subject | Estaquia | pt_BR |
| dc.subject | Explant decontamination | pt_BR |
| dc.subject | Cutting | pt_BR |
| dc.subject.cnpq | Ciências Biológicas | pt_BR |
| dc.subject.cnpq | Botânica | pt_BR |
| dc.title | Estabelecimento in vitro de segmentos apicais e formação de plântulas de libidibia ferrea (UL.) L. P. Queiroz | pt_BR |
| dc.title.alternative | In vitro establishment of apical segments and seedling formation of libidibia ferrea (UL.) L. P. Queiroz | pt_BR |
| dc.type | Trabalho de Conclusão de Curso | pt_BR |