Colonização e suscetibilidade à antimicrobianos de Staphylococcus aureus e Staphylococcus epidermidis em mãos e mucosa nasal de pacientes internados em leitos de enfermaria
| dc.contributor.advisor | Oliveira, Hugo Valério Corrêa de | |
| dc.contributor.advisor-lattes | http://lattes.cnpq.br/6595179051283009 | |
| dc.contributor.author | Peres, Amanda Ossami | |
| dc.contributor.author-lattes | http://lattes.cnpq.br/9484642945918098 | |
| dc.contributor.referee1 | Oliveira, Hugo Valério Corrêa de | |
| dc.contributor.referee1Lattes | http://lattes.cnpq.br/6595179051283009 | |
| dc.date.accessioned | 2025-04-09T16:54:09Z | |
| dc.date.issued | 2022-02-20 | |
| dc.description.abstract | To analyze the prevalence of colonization and the resistance profile of S. aureus and S. epidermidis on the hands and nasal mucosa of patients admitted to the wards of a public hospital in Manaus, Amazonas. Method: Cross-sectional, analytical observational study. Biological material was collected from the hands and nasal mucosa by rubbing with swabs over a period of 2 months. The samples were cultured in salted mannitol agar for growth and differentiation. Biofilm production was verified by phenotypic analysis on Congo red agar. To analyze the antimicrobial resistance profile, isolates of S. aureus and S. epidermidis were cultured in Müeller-Hinton agar, where small antimicrobial disks were added to their surface. Results: Of the 81 participants, Staphylococcus isolates were identified in all nasal cavities, 51 (63%) of which were S. aureus and 29 (35.8%) of which were S. epidermidis, in addition to 41 (80.4%) methicillin-resistant S. aureus (MRSA). In the hands, 80 (98.8%) samples presented Staphylococcus isolates, 52 (65%) of which were S. aureus and 26 (32.5%) of which were S. epidermidis, with 47 (94%) MRSA being identified. Biofilms were produced in 42 (80.8%) samples of S. aureus and 25 (86.2%) of S. epidermidis in the nasal mucosa and in 42 (76.43%) samples of S. aureus from the hands. Conclusion: A high prevalence of S. aureus and S. epidermidis was observed, as well as low susceptibility of these isolates to the tested antimicrobials and a high capacity to produce biofilms. | |
| dc.description.resumo | Analisar a prevalência da colonização e o perfil de resistência de S. aureus e S. epidermidis na mão e na mucosa nasal de pacientes internados nas enfermarias de um hospital público em Manaus-Am. Método: Estudo observacional analítico do tipo transversal. Foram realizadas coleta de material biológico das mãos e da mucosa nasal por meio de fricção com swabs no decorrer de 2 meses. As amostras foram cultivadas em ágar manitol salgado para crescimento e diferenciação. A verificação de produção de biofilme ocorreu por meio de análise fenotípica em ágar vermelho congo. Para a análise do perfil de resistência à antimicrobianos, isolados de S. aureus e S. epidermidis foram cultivados em meio Ágar Müeller-Hinton, onde foram adicionados pequenos discos antimicrobianos em sua superfície. Resultados: Dos 81 participantes, identificou-se isolados de Staphylococcus em todos nas fossas nasais, sendo 51 (63%) de S. aureus e 29 (35,8%) de S. epiermidis, além disso houve identificação de 41 (80,4%) S. aureus resistente à meticilina (MRSA). Nas mãos, 80 (98,8%) amostras apresentaram isolados de Staphylococcus, sendo 52 (65%) de S. aureus e 26 (32,5%) de S. epidermidis, houve identificação de 47 (94%) MRSA. Houve produção de biofilmes em 42 (80,8%) amostras de S. aureus e 25 (86,2%) de S. epidermidis na mucosa nasal e por 42 (76,43%) amostras de S. aureus das mãos. Conclusão: Constatou-se elevada prevalência de S. aureus e S. epidermidis, baixa suscetibilidade desses isolados a antimicrobianos testados e alta capacidade de produzir biofilmes | |
| dc.identifier.citation | PERES, Amanda Ossami. Colonização e suscetibilidade à antimicrobianos de Staphylococcus aureus e Staphylococcus epidermidis em mãos e mucosa nasal de pacientes internados em leitos de enfermaria. TCC (Bacharelado em Enfermagem). UEA, Manaus, 2022 | |
| dc.identifier.uri | https://ri.uea.edu.br/handle/riuea/7473 | |
| dc.publisher | Universidade do Estado do Amazonas | |
| dc.publisher.initials | UEA | |
| dc.relation.references | 1. Friedman ND, Levit D, Taleb E, Marcus G, Michaeli L, Broide M, et al. Towards a Definition for Health Care–Associated Infection. Open Forum Infectious Diseases [Internet]. 1o de junho de 2018 [citado 27 de julho de 2022];5(6):ofy116. Disponível em: https://academic.oup.com/ofid/article/doi/10.1093/ofid/ofy116/5001984. 2. WHO. World Health Organization. Guidelines on Core Components of Infection Prevention and Control Programmes at the National and Acute Health Care Facility Level. World Health Organization, 2016. Disponível em: https://apps.who.int/iris/bitstream/handle/10665/251730/9789241549929-eng.pdf 3. Karchmer AW. Nosocomial Bloodstream Infections: Organisms, Risk Factors, and Implications. Clinical Infectious Diseases [Internet]. 1o de setembro de 2000 [citado 30 de julho de 2022];31(Supplement_4):S139–43. Disponível em: http://academic.oup.com/cid/article/31/Supplement_4/S139/267789/Nosocomial-Bloodstream-Infections-Organisms-Risk 4. Oliveira WF, Silva PMS, Silva RCS, Silva GMM, Machado G, Coelho LCBB, et al. 16 Staphylococcus aureus and Staphylococcus epidermidis infections on implants. Journal of Hospital Infection [Internet]. fevereiro de 2018 [citado 27 de julho de 2022];98(2):111–7. Disponível em: https://linkinghub.elsevier.com/retrieve/pii/S0195670117306345 5. Becker K, Heilmann C, Peters G. Coagulase-Negative Staphylococci. Clin Microbiol Rev [Internet]. outubro de 2014 [citado 27 de julho de 2022];27(4):870–926. Disponível em: https://journals.asm.org/doi/10.1128/CMR.00109-13 6. Abebe GM. The Role of Bacterial Biofilm in Antibiotic Resistance and Food Contamination. International Journal of Microbiology [Internet]. 25 de agosto de 2020 [citado 27 de julho de 2022];2020:1–10. Disponível em: https://www.hindawi.com/journals/ijmicro/2020/1705814/ 7. Uruén C, Chopo-Escuin G, Tommassen J, Mainar-Jaime RC, Arenas J. Biofilms as Promoters of Bacterial Antibiotic Resistance and Tolerance. Antibiotics [Internet]. 23 de dezembro de 2020 [citado 28 de julho de 2022];10(1):3. Disponível em: https://www.mdpi.com/2079-6382/10/1/3 8. Sakr A, Brégeon F, Mège JL, Rolain JM, Blin O. Staphylococcus aureus Nasal Colonization: An Update on Mechanisms, Epidemiology, Risk Factors, and Subsequent Infections. Front Microbiol [Internet]. 8 de outubro de 2018 [citado 27 de julho de 2022];9:2419. Disponível em: https://www.frontiersin.org/article/10.3389/fmicb.2018.02419/full 9. Horino T, Hori S. Metastatic infection during Staphylococcus aureus bacteremia. Journal of Infection and Chemotherapy [Internet]. fevereiro de 2020 [citado 30 de julho de 2022];26(2):162–9. Disponível em: https://linkinghub.elsevier.com/retrieve/pii/S1341321X19303010 10. Guo Y, Song G, Sun M, Wang J, Wang Y. Prevalence and Therapies of Antibiotic-Resistance in Staphylococcus aureus. Front Cell Infect Microbiol [Internet]. 17 de março 17 de 2020 [citado 30 de julho de 2022];10:107. Disponível em: https://www.frontiersin.org/article/10.3389/fcimb.2020.00107/full 11. França A, Gaio V, Lopes N, Melo LDR. Virulence Factors in Coagulase-Negative Staphylococci. Pathogens [Internet]. 4 de fevereiro de 2021 [citado 27 de julho de 2022];10(2):170. Disponível em: https://www.mdpi.com/2076-0817/10/2/170 12. Foster TJ. Surface Proteins of Staphylococcus epidermidis. Front Microbiol [Internet]. 29 de julho de 2020 [citado 27 de julho de 2022];11:1829. Disponível em: https://www.frontiersin.org/article/10.3389/fmicb.2020.01829/full 13. Chabi R, Momtaz H. Virulence factors and antibiotic resistance properties of the Staphylococcus epidermidis strains isolated from hospital infections in Ahvaz, Iran. Trop Med Health [Internet]. dezembro de 2019 [citado 28 de julho de 2022];47(1):56. Disponível em: https://tropmedhealth.biomedcentral.com/articles/10.1186/s41182-019-0180-7 14. Freeman DJ, Falkiner FR, Keane CT. New method for detecting slime production by coagulase negative staphylococci. Journal of Clinical Pathology [Internet]. 1o de agosto de 1989 [citado 30 de julho de 2022];42(8):872–4. Disponível em: http://jcp.bmj.com/cgi/doi/10.1136/jcp.42.8.872 15. Hudzicki J. Kirby-Bauer disk diffusion susceptibility test protocol. American society for microbiology. 2009;15:55–63 16. Weinstein MP, Clinical and Laboratory Standards Institute. Performance standards for antimicrobial susceptibility testing. 2021. 17. Reta A, Mengist A, Tesfahun A. Nasal colonization of methicillin resistant Staphylococcus aureus in Ethiopia: a systematic review and meta-analysis. Ann Clin Microbiol Antimicrob [Internet]. dezembro de 2019 [citado 20 de agosto de 2022];18(1):25. Disponível em: https://ann-clinmicrob.biomedcentral.com/articles/10.1186/s12941-019-0324-y 18. Almeida GCM de, Lima NGM, Santos MM dos, Melo MCN de, Lima KC de. Colonização 18 nasal por Staphylococcus sp. em pacientes internados. Acta paul enferm [Internet]. julho de 2014 [citado 1o de outubro de 2022];27(3):273–9. Disponível em: http://www.scielo.br/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0103-21002014000300273&lng=pt&tlng=pt 19. Sousa Junior FC de, Nunes ÉW de F, Nascimento ED do, Oliveira SM de, Melo MCN de, Fernandes MJ de BC. Prevalência de Staphylococcus spp resistentes à meticilina isolados em uma maternidade escola da Cidade de Natal, Estado do Rio Grande do Norte. Rev Soc Bras Med Trop [Internet]. abril de 2009 [citado 1o de outubro de 2022];42(2):179–82. Disponível em: http://www.scielo.br/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0037-86822009000200017&lng=pt&tlng=pt 20. Lakhundi S, Zhang K. Methicillin-Resistant Staphylococcus aureus: Molecular Characterization, Evolution, and Epidemiology. Clinical Microbiology Reviews. 2018;31(4):103. 21. Guzmán-Blanco M, Mejía C, Isturiz R, Alvarez C, Bavestrello L, Gotuzzo E, et al. Epidemiology of meticillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA) in Latin America. International Journal of Antimicrobial Agents 2009;34:304–8. https://doi.org/10.1016/j.ijantimicag.2009.06.005. 22. Liu C, Bayer A, Cosgrove SE, Daum RS, Fridkin SK, Gorwitz RJ, et al. Clinical Practice Guidelines by the Infectious Diseases Society of America for the Treatment of Methicillin-Resistant Staphylococcus aureus Infections in Adults and Children. Clinical Infectious Diseases [Internet]. 1o de fevereiro de 2011 [citado 13 de setembro de 2022];52(3):e18–55. Disponível em: https://academic.oup.com/cid/article/52/3/e18/306145 23. Zurita J, Mejía C, Guzmán-Blanco M. Diagnosis and susceptibility testing of methicillin-resistant Staphylococcus aureus in Latin America. Braz J Infect Dis [Internet]. dezembro de 2010 [citado 19 de setembro de 2022];14:97–106. Disponível em: 19 http://www.scielo.br/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S141386702010000800005&lng=en&nrm=iso&tlng=en 24. Rezaei M, Moniri R, Mousavi SGA, Jabari Shiade M. Prevalence of Biofilm Formation Among Methicillin Resistance Staphylococcus aureus Isolated From Nasal Carriers. Jundishapur J Microbiol [Internet]. 1o de agosto de 2013 [citado 18 de setembro de 2022];6(6). Disponível em: https://brief.land/jjm/articles/56351.html | |
| dc.rights | Attribution-NonCommercial-NoDerivs 3.0 Brazil | en |
| dc.rights.uri | http://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/3.0/br/ | |
| dc.subject | Infecção hospitalar | |
| dc.subject | Infecções estafilocócicas | |
| dc.subject | Biofilmes | |
| dc.subject | Antibióticos - resistência | |
| dc.title | Colonização e suscetibilidade à antimicrobianos de Staphylococcus aureus e Staphylococcus epidermidis em mãos e mucosa nasal de pacientes internados em leitos de enfermaria | |
| dc.title.alternative | Colonization and antimicrobial susceptibility of Staphylococcus aureus and Staphylococcus epidermidis on hands and nasal mucosa of patients hospitalized in ward beds | |
| dc.type | Trabalho de Conclusão de Curso |
Arquivos
Pacote original
1 - 1 de 1
Carregando...
- Nome:
- Colonicação_e_suscetibilidade.pdf
- Tamanho:
- 339.94 KB
- Formato:
- Adobe Portable Document Format